EXTRACCIÓN "CASERA" DE ADN

                                                       MATERIALES
BIOLÓGICOS                                                                        DEL LABORATORIO
- Higadillo de pollo                                                              -Alcohol etílico
- Agua mineral                                                                    - Varilla fina de vidrio
- Sal de mesa                                                                       - Tubo de ensayo
- Bicarbonato sódico                                                           - Vaso
- Detergente líquido                                                             - Trapo
                                                                                             - Mortero
                                                         MÉTODOS
La extracción del ADN es que los iones salinos se extraen hacia las cargas negativas del ADN con lo que permite su disolución y luego la extracción de la célula.
Esto se hace rompiendo la célula con el detergente, se vacía su contenido molecular en una disolución tampón en la que se disuelve el ADN. El tampón tiene ADN y restos moleculares. Las preoteínas asociadas al ADN se fraccionan en cadenas más pequeñas. Por último se extrae el ADN de la mezcla de tampón y detergente, y para ello se utiliza alcohol etílico.
                                                          PRÁCTICA
1º Para formar el tampón echar en un vaso:
     *120ml de agua mineral
     *1.5g de sal
     *5g de bicarbonato sódico
     *5ml de detergente líquido
2º Coger el higadillo de pollo y partirlo en trocitos
3º Echarlo en el mortero y triturarlo todo muy bien
4º Echarle harina
5º Añadir un poco de agua mineral
6º Echar en un tubo de ensayo 5ml de esa preparación
7º Echar 10ml del tamp.on preparado al principio
8º Agitar enérgicamente durante 2 minutos.
9º Con un embudo y un trapo, colamos la muestra echándola en otro tubo de ensayo

10º Retirar 5 ml de esa muestra y echarla en un tubo de ensayo
11º Añadir 10ml de alcohol etílico
12º Dejarlo unos minutos
13º Con una varilla remover la muestra sólo justo al empezar la muestra para enrollar fragmentos de mayor tamaño.
                                                          RESULTADOS

Podemos observar el ADN aunque no es puro ya que contiene fragmentos de ARN.

                                                             CONCLUSIÓN
Hemos podido ver perfectamente el ADN

RECONOCIMIENTO DE LÍPIDOS (SOLUBILIDAD)

                                                            MATERIALES
BIOLÓGICOS                                                                 DEL LABORATORIO
-Aceite                                                                                     - Tubos de ensayo
- Agua                                                                                      -Eter
                                                         MÉTODOS
Los lípidos son insolubles al agua. Al moverlos con el agua se dividen en gotitas y forman una emulsión lechosa, y cuando esta en reposo desaparece ya que las gotas se juntan y forman una capa de grasa que se sitúa sobre el agua.
Pero los lípidos son solubles a disolventes orgánicos.
                                                          PRÁCTICA
1º Cogemos dos tubos de ensayo, echamos 2ml de aceite en cada uno
2º En un tubo de ensayo añadimos 2ml de agua
3º En el otro tubo añadimos 2ml de éter
4º Agitamos fuertemente
5º Dejamos reposar
6º Observamos los resultados
                                                 RESULTADOS

El aceite se ha disuelto en el éter y sube debido a su densidad
En el agua no se ha disuelto















CONCLUSIÓN
Hemos podido ver que las grasas con solubles en disolventes orgánicos

RECONOCIMIENTO DE LÍPIDOS (TINCIÓN)

                                                           MATERIALES
BIOLÓGICOS                                                                        DEL LABORATORIO
- Aceite                                                                                           -Tubos de ensayo
                                                                                                        - Gradilla
                                                                                                        - Solución alcohólica de Sudán III
                                                                                                        - Tinta china roja
                                                          MÉTODOS
Todos los lípidos se colorean selectivamente de rojo-anaranjado con el colorante Sudán III.
                                                          PRÁCTICA
1º Coger dos tubos de ensayo y colocar en los dos, 2ml de aceite.
2º A uno de los tubos añadimos 5 gotas de solución alcohólica de Sudán III
3º En el otro tubo añadimos 5 gotas de tinta roja
4º Agitamos los dos tubos
5º Dejamos reposar
6º Observamos
                                                      RESULTADOS

Con esto detectamos las grasas
El naranja es homogéneo
Quedan grumos














CONCLUSIÓN
Hemos podido ver cómo la soluión alcohólica de Sudán III es específico para las grasas.

RECONOCIMIENTO DE LÍPIDOS (SAPONIFICACIÓN)

                                                           MATERIALES
BIOLÓGICOS                                                                 DEL LABORATORIO
- Aceite                                                                                    - Tubos de ensayo
                                                                                                - Solución NaOH al 20%
                                                                                             
                                                                  MÉTODOS
Las grasas, el aceite en este caso reaccionan en caliente con el hidróxido sódico y se descomponen  en glicerina y ácidos grasos. Se forman jabones al combinar con los iones.
                                                                   PRÁCTICA
1º Colocamos en un tubo de ensayo 2ml de aceite.
2º Añadimos en el tubo 2ml de NaOH al 20%
3º Agitamos enérgicamente
4º Colocamos el tubo de ensayo al baño maría durante 25 minutos aproximadamente.
5º Obeservamos
                                                                 RESULTADOS

Hemos podido ver en el tubo tres fases:
1.La parte de abajo clara donde está la sosa con la glicerina
2.La parte del medio semisólida que es el jabón
3.La parte de arriba con aceite














CONCLUSIÓN
Hemos podido ver bien la formación del jabón

RECONOCIMIENTO DE PRÓTIDOS (REACCIONES COLOREADAS ESPECÍFICAS "BIURET")

                                                         MATERIALES
BIOLÓGICOS                                                                         DEL LABORATORIO
- Solución de albúmina al 1-2%                                        - Tubos de ensayo
- Solución de SO4Cu al 1%                                               -Gradilla
- NaOH al 20%
                                                            MÉTODOS
Vamos a hacer la reacción de biuret que la produce que los péptidos y las proteínas.
El reactivo de Biuret se coordina con los enlaces peptídicos y forman un complejo de color bioleta cuya intensidad de color depende de la concentración de proteínas.
                                                             PRÁCTICA
1º Poner en un tubo de ensayo 3ml de solución de albúmina al 1-2%
2º Añadimos 5 gotas de solución de SO4Cu al 1%
3ºEchamos 3 ml de solución NaOH al 20%
4º Agitamos muy bien para que se mezcle
5º Observamos los resultados
                                                        RESULTADOS


Se convierte en color violeta
















CONCLUSIONES
Hemos podido observar el color del biuret y su reacción.

RECONOCIMIENTO DE PRÓTIDOS (COAGULACIÓN DE LAS PROTEÍNAS)

                                                     MATERIALES
BIOLÓGICOS                                                                 DEL LABORATORIO
- Leche                                                                           -Tubos de ensayo
- Solución de HCL concentrado                                    - Gradilla
- Alcohol etílico                                                             - Pipeta
                                                      MÉTODOS
Las moléculas de las proteínas son grandes y forman con el agua soluciones coloidales. Al calentarlas o al echar ácidos o alcohol se precipitan formando coagulaciones.
Al coagularse se desordena al destruir las estructuras de la proteína,
                                                    PRÁCTICA
1º Ponemos en tres tubos de ensayo 3 ml de leche.
2º Un tubo lo ponemos al baño María durante 25 minutos
       Otro tubo le añadimos 3ml de HCL concentrado
       Al restante le añadimos 3 ml de alcohol etílico
3º Observamos los resultados
                                                    RESULTADOS

Se han desnaturalizado las proteínas

La leche con HCL es la que más grumos contiene

                                                                   CONCLUSIÓN
Hemos visto perfectamente como se desnutraliza las proteínas con el ejemplo de la leche.

ESTUDIO DE LA MITOSIS EN CÉLULAS DE LA RAÍZ DE CEBOLLA

                                                               MATERIALES
BIOLÓGICOS                                                       DEL LABORATORIO
-Cebolla                                                                   -Microscopio                  -Portaobjetos
-Orceína A                                                               -Cubreobjetos                 -Lanceta estéril
-Orceína B                                                               -Pinzas                            -Palillos
                                                                                -Mechero de alcohol
                                                                                -Tijeras                           -Papel de filtro
                                                                                -Vaso de precipitados
                                                                                -Vidrio de reloj
                                                             MÉTODO
La mitosis en las plantas se encuentran en los extremos de los tallos y de las raíces por ello vamos a utilizar las raíces de una cebolla para intentar ver la mitosis
                                                          PRÁCTICA
1º Metemos la parte inferior de la cebolla durante tres o cuatro días para que rus raíces aumenten.
2º Coger dos o tres raicillas de la cebolla cortándolas con las tijeras y cogiéndolo con las pinzas. Intentamos coger los meritemos primarios.
3º Ponemos esas tres raicillas en un vidrio de reloj.
4º Añadimos dos o tres gotas de acético Orceína A

5º Poner a calentar durante 8 minutos sin que llegue a evaporarse la orceína.
6º Cojemos una raicilla y la colocamos sobre un portaobjetos.
7º Añadimos una gota de Orceína B y la dejamos actuar durante dos minutos.
8º Con las pinzas agarramos el portaobjeto y la raicilla con mucho cuidado y las lavamos por encima con agua.

9º Ponemos el cubreobjetos y con el papel secante hacemos la técnica "Scrash" que consiste en envolver el portaobjetos con el papel secante y apretar.
10º La muestra está lista, ahora observamos al microscopio
                                                     

                                    RESULTADOS

Podemos observar una placa ecuatorial y una metafase.
















CONCLUSIÓN
Esperaba ver bien la mitosis y no ha podido ser, pero si que he podido observar los cromosomas, además en las muestras de otros grupos de mi clase lo he visto mucho mejor.
                             

OBSERVACIÓN DE TEJIDOS VEGETALES

                                                                     MATERIALES

MATERIALES DEL LABORATORIO                       MATERIALES BIOLÓGICOS
  Microscopio                                                                              Preparaciones histológicas
                                    
                                    MÉTODOS
1º Debemos conocer como funciona el microscopio y para ello esta explicado al principio de este blog.

2º Se coloca la preparación y observamos las diferentes preparaciones

                                                                      RESULTADOS

Espero poder ver los diferentes tejidos y sus partes

1. Colenquima angular

Objetivo x750

2. Rizoma                                                                                                                                               

Objetivo x750                                                                                                                                       

3. Raíz dicotiledonea                                                                                                                           

Objetivo x750                                                                                                                               

4. Floema                                                                                                                                                

Objetivo x400                                                                                                                                      

5. Xilema                                                                                                                                                   

Objetivo x400                                                                                                                                      

6. Tallo dicotiledonea secundaria                                                                                                             

Objetivo x750                                                                                                                                   

7. Colenquima                                                                                                                                           

Objetivo x400                                                                                                                                      

Objetivo x750                                                                                                                                     

8. Tallo dicotiledonea estructural/primaria                                                                                               

Objetivo x600                                                                                                                                  

9. Membrana vegetal                                                                                                                           

Objetivo x600                                                                                                                               

CONCLUSIÓN

Hemos podido ver bien los tejidos vegetales y con ayuda del profesor que nos ha explicado las partes.

AZÚCARES REDUCTORES Y ALMIDÓN EN ALIMENTOS

                                               MATERIALES
BIOLÓGICOS                                                                      DEL LABORATORIO
-Solución de Fehling A y B                                                                         -Tubo de ensayo
-Leche                                                                                                        -Gradilla
-Palomitas                                                                                                  -Pinzas
-Cereales                                                                                                    -Mechero
- Lonchas de pavo                                                                                      -Pipetas
-Lugol
                                                                      MÉTODOS
En esta práctica vamos a comprobar que alimentos contienen almidón y cuales contienen azúcares reductores, y esto es lo que yo creo que va a pasar:
Cereales: LUGOL+  FEHELING +
Leche: LUGOL +  FEHELING +
Palomitas: LUGOL+  FEHELING +
Pavo: LUGOL-  FEHELING -
                                                                       PRÁCTICA
A)Primero comprobamos si contienen almidón echando lugol
1º Cogemos cada producto y le echamos unas gotas de lugol, se se vuelve negro contiene almidón.
B) Después procedemos a hacer la prueba del Feheling
1º Poner en distintos tubos de ensayo 3ml de leche, de palomitas y cereales  (previamente machacados)
2º Añadimos 1ml de solución de Fehling A y 1ml de Fehling B en cada tubo de ensayo con la pipeta.
3º Calentamos todos los tubo con el mechero hasta que hiervan.
4º Si la muestra se vuelve de color rojo es positiva y si se queda azul o cambia a azul verdoso es negativa.
5º Observar los resultados.
                                                                      RESULTADOS

Aquí tenemos las muestras con el feheling sin mover

Aquí ya están agitados

Aquí tnemos los alimentos cuando les hemos echado lugol

Finalmente tras calentarlos tienen este color

                                                  Cereales: LUGOL +  FEHELING

                                                  Leche: LUGOL -  FEHELING -

                                                  Palomitas: LUGOL +  FEHELING 

                                                  Pavo: LUGOL -  FEHELING +

CONCLUSIÓN

Algunas cosas han salido como las esperaba y otras no, por ejemplo el caso de la leche pensé que iba a contener almidón y azúcares reductores pero no.

SALIVA, PAN Y ALMIDÓN

                                                                   MATERIALES
BIOLÓGICOS                                                                     DEL LABORATORIO
-Solución de Fehling A y B                                                                         -Tubo de ensayo
-Saliva                                                                                                        -Gradilla
-Solución de almidón                                                                                  -Pinzas
-Lugol                                                                                                         -Mechero
-Pan                                                                                                            -Pipetas
-Ácido clorhídrico                                                                                        -Horno
                                                                             MÉTODOS
En esta práctica vamos a calentar las muestras para después echar el feheling.

                                                                              PRÁCTICA

1º En un tubo de ensayo ponemos nuestra saliva y le añadimos 3ml de almidón
2º En otro tubo de ensayo ponemos pan masticado por nosotros (hecho una papilla) y un poco de agua.
3º Por último en otro tubo de ensayo ponemos HCL con almidón.
4º Metemos todos al horno a 27ºC durante 20 minutos.
5º Una vez pasado el tiempo le echamos feheling y vemos los resultados.








                                                                                  RESULTADOS
Todos los tubos han salido positivos

La saliva no tiene almidón
La saliva con pan si tiene almidón












                                                                             CONCLUSIÓN
Hemos podido observar que efectivamente, la saliva contiene glándulas capaces de degradar el almidón.